夏天到了，細(xì)胞更容易被污染，很多養(yǎng)細(xì)胞的朋友在這方面困惑頗多，今天針對(duì)貼壁生長(zhǎng)的細(xì)胞談?wù)劇?在討論之前，大家首先要有一個(gè)概念，即潔凈區(qū)，并不是沒(méi)有細(xì)菌，而是細(xì)菌的數(shù)量非常少，在我們的潔凈操作臺(tái)里，并不是真正一個(gè)細(xì)菌都沒(méi)有的，所以在操作的時(shí)候還是要盡量利索迅速地完成操作。盡量減少進(jìn)入培養(yǎng)體系細(xì)菌的數(shù)量。 所以處理細(xì)菌污染的重要原則就是：無(wú)限地稀釋細(xì)菌的濃度，無(wú)限地減少細(xì)菌的數(shù)量！

對(duì)于細(xì)菌污染（常見(jiàn)為金黃色葡萄球菌和大腸桿菌）；

污染處理流程

1、將污染的培養(yǎng)液倒掉，轉(zhuǎn)燒瓶口，加入10 mlPBS，適當(dāng)晃動(dòng)清洗培養(yǎng)瓶，然后倒掉。轉(zhuǎn)燒瓶口。

2、繼續(xù)加入10mlPBS，同樣方法晃動(dòng)，清洗培養(yǎng)瓶，然后倒掉。

3、繼續(xù)加入5mlPBS，同樣方法洗瓶，主要是培養(yǎng)面，然后倒掉。

4、重復(fù)步驟3再洗。

5、重復(fù)步驟3再洗。

6、加入3-5ml雙抗，洗瓶，靜置3-5分鐘，然后吸出。

7、加入3ml雙抗，洗瓶，靜置3-5分鐘，然后吸出。

8、再加入5mlPBS洗瓶，然后吸出。

9、加入10ml培養(yǎng)液，加入2ml雙抗，放置培養(yǎng)箱培養(yǎng)，5小時(shí)之后，倒掉培養(yǎng)基，加入PBS洗瓶?jī)纱危缓蠹尤胍让赶荡蚝笾糜陔x心機(jī)800-1000r/min離心，然后洗一次。置于新的培養(yǎng)瓶里培養(yǎng)，培養(yǎng)體系加入2ml雙抗。

10、24h之后，視情況換液，若仍然污染嚴(yán)重，培養(yǎng)基渾濁，重復(fù)以上步驟，若看不到污染物，則繼續(xù)步驟1)、3）、4）、6）、8），然后加入培養(yǎng)液培養(yǎng)，培養(yǎng)體系加入2ml雙抗。

11、24h之后，若仍污染嚴(yán)重，可再重復(fù)一次，若還污染只能棄之（不過(guò)一般沒(méi)有出現(xiàn)這種情況），若鏡下不見(jiàn)污染物，則換液PBS洗瓶，正常培養(yǎng)。

若為霉菌或者真菌污染：

     加入兩性霉素B清洗和培養(yǎng)，終濃度一般為2.5μg/ml（在30μg/ml時(shí)會(huì)有細(xì)胞毒性）。另外也可以選擇在培養(yǎng)基里加3ug/ml的制霉菌素或放線菌素D。 其它操作同；

若為支原體污染有幾種支原體清除劑，

     1.BM-Cyclin（就是泰妙菌素+米諾環(huán)素）2.環(huán)丙沙星，這也是一種支原體較為敏感的抗生素，3.MRA，這個(gè)是商業(yè)化的支原體去除劑（Mycoplasma Removal Agent）是喹諾酮族抗生素的衍生物，使用后發(fā)覺(jué)，采用泰妙菌素和米諾環(huán)素的效果更好些，支原體耐藥率低，同時(shí)對(duì)細(xì)胞的抑制也較低。；

除此還是需要你在無(wú)菌觀念和無(wú)菌操作上下大功夫加強(qiáng)了，預(yù)防為主，還是要強(qiáng)調(diào)無(wú)菌操作，尤其注意血清的質(zhì)量，這個(gè)是主要來(lái)源。

在操作的過(guò)程中，一定要小心操作動(dòng)作，輕柔緩慢，切忌大動(dòng)作魯莽。防止細(xì)胞脫落。當(dāng)然如果你的細(xì)胞仍有富余或者凍存的，我還是建議你把污染的扔掉，再?gòu)?fù)蘇方便省事。這個(gè)拯救細(xì)胞還是主要針對(duì)你就只剩這一瓶細(xì)胞無(wú)路可退的時(shí)候。